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一種用于檢測(cè)阪崎腸桿菌的分子馬達(dá)生物傳感器試劑盒

專利號(hào)
CN103088118B
公開(kāi)日期
2014-10-22
申請(qǐng)人
北京出入境檢驗(yàn)檢疫局檢驗(yàn)檢疫技術(shù)中心; 北京市檢驗(yàn)檢疫科學(xué)技術(shù)研究院(北京市朝陽(yáng)區(qū)甜水園街6號(hào))
發(fā)明人
張捷; 馬貴平; 周琦; 楊向瑩; 劉國(guó)傳; 張惠媛; 李冰玲; 盧曉宇; 劉巖; 顧德周; 汪琦; 張昕; 王佩榮; 樂(lè)加昌; 陳廣全
IPC分類(lèi)
C12Q1/68; C12Q1/10
技術(shù)領(lǐng)域
腸桿菌,熒光,桿菌,生物
地域: 北京市 北京市朝陽(yáng)區(qū)

摘要

一種用于檢測(cè)阪崎腸桿菌的分子馬達(dá)生物傳感器試劑盒屬于動(dòng)物源性食品微生物快速檢測(cè)領(lǐng)域,主要解決傳統(tǒng)檢測(cè)方法時(shí)間過(guò)長(zhǎng)(5~6天)。本發(fā)明的核心技術(shù)是利用載色體Chromatophore上的F0F1-ATPase分子馬達(dá)生物傳感器,F(xiàn)0F1-ATP合酶由于能快速地旋轉(zhuǎn),通過(guò)旋轉(zhuǎn)它建立了催化位點(diǎn)與質(zhì)子轉(zhuǎn)運(yùn)之間的偶聯(lián)。首先在ATP合酶的ε亞基上連接ITS探針,將待測(cè)樣品和陰性對(duì)照分別與生物傳感器結(jié)合后,比較其催化ATP合成10分鐘后的ATP產(chǎn)生量,ATP合成的多寡可以通過(guò)環(huán)境中H+的量進(jìn)行測(cè)量,而H+的多寡通過(guò)F-DHPE所體現(xiàn)的熒光強(qiáng)度大小來(lái)獲得。本試劑盒可對(duì)待測(cè)樣本中的阪崎腸桿菌進(jìn)行快速、靈敏、高通量的檢測(cè)。

說(shuō)明書(shū)

1 2
一種用于檢測(cè)阪崎腸桿菌的分子馬達(dá)生物傳感器試劑盒 技術(shù)領(lǐng)域 [0001] 本發(fā)明是關(guān)于動(dòng)物源性食品微生物快速檢測(cè)技術(shù)的一種。 背景技術(shù) [0002] 傳統(tǒng)的病原菌檢測(cè)方法要求對(duì)每個(gè)檢驗(yàn)項(xiàng)目進(jìn)行非選擇性增菌、選擇性增菌、分離、篩選和鑒定等步驟,一般需要6天才能出具檢測(cè)報(bào)告,嚴(yán)重影響貨物的品質(zhì)和貨架壽命。一些新的技術(shù)如PCR技術(shù)、免疫學(xué)檢測(cè)技術(shù)、生物芯片技術(shù)等檢測(cè)方法仍依賴于傳統(tǒng)的檢測(cè)步驟,即需要進(jìn)行增菌,耗時(shí)耗力,完成一次檢測(cè)通常需要幾天的時(shí)間。這樣不僅增加了實(shí)驗(yàn)室的工作量,而且也不利于食品工業(yè)中生產(chǎn)流程的監(jiān)測(cè)、終產(chǎn)品的質(zhì)量控制以及政府部門(mén)對(duì)食品安全的管理和控制。由于進(jìn)出口食品的大量增加,因此急需可靠有效的快速檢測(cè)方法,縮短檢測(cè)時(shí)間,促進(jìn)我國(guó)食品的進(jìn)出口貿(mào)易。 發(fā)明內(nèi)容 [0003] 以受控分子馬達(dá)技術(shù)為核心,集成核酸探針識(shí)別、熒光探針標(biāo)記與檢測(cè)等技術(shù),建立了一個(gè)全新概念的快速檢測(cè)技術(shù)體系。利用ATP酶作為載體對(duì)目標(biāo)物進(jìn)行檢測(cè)具有靈敏度高、特異性強(qiáng)、快速的特點(diǎn)。在F0F1-ATPase分子馬達(dá)連接上特異的核酸探針,可以實(shí)現(xiàn)對(duì)特定食品微生物的快速、特異性、高通量的檢測(cè)。本發(fā)明可將檢測(cè)時(shí)間縮短至2天,且檢測(cè) 2 靈敏度能達(dá)到10CFU/ml,滿足現(xiàn)有的食品微生物檢測(cè)范圍。 附圖說(shuō)明 [0004] 附圖1為分子馬達(dá)生物傳感器模式圖(其中a、b、c、α、β、δ、γ、ε均為ATP合酶亞基),1為ε亞基抗體,2為鏈霉親和素(Strptavidin),3為N-biotin,4為ITS探針, 5為阪崎腸桿菌單鏈DNA。 [0005] 附圖2為chro ITS對(duì)不同種菌株的檢測(cè)結(jié)果,縱坐標(biāo)表示熒光值,橫坐標(biāo)表示檢測(cè)的樣本,其中1為水,2為阪崎腸桿菌,3為副溶血性弧菌,4為大腸桿菌,5為沙門(mén)氏菌,6為霍亂弧菌。 具體實(shí)施方式 [0006] 根據(jù)阪崎腸桿菌ITS基因設(shè)計(jì)特異性核酸探針5’-actctgacacaccgcgcattcctg,其中探針的5’用生物素進(jìn)行標(biāo)記。將該探針通過(guò)生物素抗體連接在分子馬達(dá)上面,利用分子馬達(dá)生物傳感器即可對(duì)待測(cè)樣本的DNA進(jìn)行檢測(cè),當(dāng)樣品為阪崎腸桿菌DNA時(shí),檢測(cè)體系的熒光值會(huì)發(fā)生明顯的變化,通過(guò)這一變化即可判斷樣本為陽(yáng)性。為此,我們?cè)O(shè)計(jì)了一個(gè)試劑盒,可以方便、快速對(duì)食品中的阪崎腸桿菌進(jìn)行檢測(cè)。 [0007] 試劑盒組成: [0008] 編號(hào) 組分名稱 數(shù)量 保存條件 1 Chro ITS 20μl ﹣20℃ 2 合成buffer 10ml 室溫 3 ADP(1.6mol/l) 1ml ﹣20℃ 4 1×PBS 25ml 室溫 5 熒光素酶/熒光素 100個(gè)單位 ﹣20℃ 6 熒光素酶/熒光素重組緩沖液 12ml ﹣20℃ 7 無(wú)菌水 5ml 室溫 [0009] 操作步驟如下: [0010] 1.取1.5ml EP管,加入待測(cè)樣本10μl。 [0011] 2.將上述EP管置于95℃水浴5min,然后轉(zhuǎn)移至50℃水浴1min。 [0012] 3.取2μl chro ITS,用合成buffer稀釋到一定的倍數(shù)。取稀釋后的chro 10μl加入上述EP管。 [0013] 4.另取1個(gè)EP管加入10μl無(wú)菌水置于95℃水浴5min,然后轉(zhuǎn)移至50℃水浴 1min,再加入10μl合成buffer作為本底對(duì)照,短暫振蕩使反應(yīng)體系混勻。 [0014] 5.再向2個(gè)EP管中分別加入30μl啟動(dòng)buffer(啟動(dòng)buffer由ADP(1.6mol/l)和合成buffer按體積比1:3配制,每次實(shí)驗(yàn)按需要取一定的量配制,現(xiàn)用現(xiàn)配),振蕩使反應(yīng)體系混勻,然后立 即短暫離心以除去管蓋內(nèi)壁上的水珠。 [0015] 6.將上述反應(yīng)體系放入37℃恒溫?fù)u床中溫育10min。 [0016] 7.將EP管從搖床中取出,分別加入200μl PBS緩沖液,振蕩使體系混勻。 [0017] 8.取一塊干凈的96孔板,將2管中的最終反應(yīng)體系加入其中,每個(gè)體系加3孔,每孔加樣50μl,然后對(duì)每個(gè)加樣孔分別加入30μl已配置好的熒光素酶溶液(將熒光素酶/熒光素重組緩沖液加入裝有熒光素酶/熒光素的棕色玻璃瓶中,蓋上瓶塞,反復(fù)顛倒幾次混勻,不可振蕩。使用前應(yīng)將混合液在室溫放置1h),用槍反復(fù)吹打幾次使體系混勻。 [0018] 9.將96孔板上機(jī)檢測(cè),處理數(shù)據(jù),對(duì)各組數(shù)據(jù)取平均值,然后用樣本數(shù)值減去本底數(shù)值即為樣本的實(shí)際熒光值。 [0019] 通過(guò)實(shí)驗(yàn),分子馬達(dá)生物傳感器chro ITS具有良好的特異性,用chro ITS對(duì)水、阪崎腸桿菌、副溶血性弧菌、大腸桿菌、沙門(mén)氏菌、霍亂弧菌進(jìn)行檢測(cè),阪崎腸桿菌的熒光值明顯高于水和其他對(duì)照菌的熒光值,具體數(shù)據(jù)見(jiàn)下表,結(jié)果見(jiàn)附圖2。 [0020] 樣品(40ng/mL) 熒光值 水 284994 阪崎腸桿菌 391027 副溶血性弧菌 309041 大腸桿菌 328063

權(quán)利要求

1.一種用于檢測(cè)阪崎腸桿菌的分子馬達(dá)生物傳感器試劑盒,包含下述組分:
其中,所述分子馬達(dá)生物傳感器為Chro-ITS,其構(gòu)建方法為:
根據(jù)阪崎腸桿菌ITS基因設(shè)計(jì)特異性核酸探針5’-ACTCTGACACACCGCGCATTCCTG,其中探針的5’用生物素進(jìn)行標(biāo)記,將該探針通過(guò)生物素抗體連接在分子馬達(dá)上面:將生物素標(biāo)記的ε亞基抗體結(jié)合在F0F1-ATPase的ε亞基上,然后用鏈霉親和素(Streptavidin)與ε亞基抗體上的生物素結(jié)合,最后將生物素標(biāo)記的探針與鏈霉親和素結(jié)合;
應(yīng)用所述分子馬達(dá)生物傳感器試劑盒檢測(cè)阪崎腸桿菌的步驟包括:
1)取1.5mlEP管,加入待測(cè)樣本10μl;
2)將上述EP管置于95℃水浴中5min,然后轉(zhuǎn)移至50℃水浴1min;
3)取2μlchroinvA,用合成buffer稀釋到一定的倍數(shù),取稀釋后的chro10μl加入上述EP管;
4)另取1個(gè)EP管加入10μl無(wú)菌水置于95℃水浴5min,然后轉(zhuǎn)移至50℃水浴1min,再加入10μl合成buffer作為本底對(duì)照,短暫振蕩使反應(yīng)體系混勻;
5)再向2個(gè)EP管中分別加入30μl啟動(dòng)buffer,啟動(dòng)buffer由1.6mol/l的ADP與合成buffer按體積比1∶3配制,每次實(shí)驗(yàn)按需要取一定的量配制,現(xiàn)用現(xiàn)配,振蕩使反應(yīng)體系混勻,然后立即短暫離心以除去管蓋內(nèi)壁上的水珠;
6)將上述反應(yīng)體系放入37℃恒溫?fù)u床中溫育10min;
7)將EP管從搖床中取出,分別加入200μlPBS緩沖液,振蕩使體系混勻;
8)取一塊干凈的96孔板,將2管中的最終反應(yīng)體系加入其中,每個(gè)體系加3孔,每孔加樣50μl,然后對(duì)每個(gè)加樣孔分別加入30μl已配置好的熒光素酶溶液,所述熒光素酶溶液配制方法為:將熒光素酶/熒光素重組緩沖液加入裝有熒光素酶/熒光素的棕色玻璃瓶中,蓋上瓶塞,反復(fù)顛倒幾次混勻,不可振蕩,使用前應(yīng)將混合液在室溫放置1h;用槍反復(fù)吹打幾次使體系混勻;
9)將96孔板上機(jī)檢測(cè),處理數(shù)據(jù),對(duì)各組數(shù)據(jù)取平均值,然后用樣本數(shù)值減去本底數(shù)值即為樣本的實(shí)際熒光值。
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